重要：製品ウェブページの製品別のフローサイトメトリープロトコールから、適切な固定と透過化の条件、また抗体の推奨希釈率をご確認ください。
A. 溶液および試薬
本プロトコールに必要なすべての試薬は、Intracellular Flow Cytometry Kit (Triton X-100) #51995に含まれています。下に記載されているカタログ番号から、個別にお求めいただくこともできます。
注意：溶液は、逆浸透脱イオン (RODI) 水、または同等の精製水で調製してください。
- 1X Phospate Buffered Saline (PBS)：1X PBS 1 Lを用意する場合：100 mLの10X PBS (#12528) を精製水900 mLに加え、混合してください。
- 4%ホルムアルデヒド、メタノール不含 (#47746)
- Cell Permeabilization Buffer: #39487をそのまま使用するか、10 mLのAntibody Dilution Bufferに30 µlのTriton X-100を加えて10 mLにしてください。4℃で保存してください。
- 抗体希釈バッファー：Flow Cytometry Antibody Dilution Buffer (#13616) をそのまま使用するか、0.5 gのウシ血清アルブミン (BSA) (#9998) を100 mLの1X PBSに溶解して0.5% BSA PBSバッファーを調製してください。4℃で保存してください。
- 推奨二次抗体：未標識抗体の検出には、使用する一次抗体の宿主生物種 (例：ラビット) に対応した二次抗体を選択してください。フローサイトメトリー検証済み二次抗体の最新リストは、こちらからご覧いただけます。
注意：実験に蛍光細胞染色色素 (生死判定色素、DNA色素など) を使用する場合は、色素の製品ページの推奨プロトコールを参照してください。フローサイトメトリーでの使用が検証済みの、細胞染色色素の一覧をご覧ください。
B. 固定と透過化
注意：接着細胞または組織は、固定の前に分散させ、単一細胞の懸濁液にしてください。
注意：遠心分離の最適条件は、細胞のタイプと試薬の容量によって異なります。一般的には、150-300 gで1-5分間で細胞を十分にペレット化することができます。
注意：全血を用いる場合は、固定の前に赤血球を溶解し、遠心分離で洗浄してください。
注意：エピトープがホルムアルデヒドやTriton X-100によって破壊されるときは、固定の前にCDマーカーまたは他の細胞外タンパク質を標的とする抗体を追加してください。この場合、抗体が標的に結合したままの状態で固定と透過化プロセスを行います。初めて行う実験については、スモールスケールで予備実験を行うことをお勧めします。
- 遠心分離して細胞をペレット化し、上清を除去してください。
- 100万細胞当たり100 µLの4%ホルムアルデヒドを加え、再懸濁してください。個々の細胞どうしがクロスリンクされないように、ペレットをよくほぐしてください。
- 室温 (20-25℃) で15分間固定してください。
- 1X PBSをさらに加えて遠心分離し、細胞を洗ってください。上清は適切な廃棄容器に捨ててください。
- 100万細胞当たり約100 µLの細胞透過化バッファーを加え、細胞を再懸濁してください。
- 室温で10分間インキュベートしてください。
- 染色操作に進むか、PBSに懸濁して4°Cに一晩保存してください。
C. 免疫染色
注意：細胞数を血球計算盤かその他の方法で計測してください。
- 必要な細胞数をチューブかウェルに分注してください。(通常、アッセイごとに5x105-1x106細胞です。)
- 細胞を遠心分離し、上清を捨ててください。
- 細胞を一次抗体反応液100 µLに再懸濁してください。(一次抗体反応液は抗体原液を抗体希釈バッファーで希釈して調製してください。希釈率は製品データシートの推奨希釈率に従うか、タイトレーションを行って決定してください。)
- 室温 (20-25℃) で1時間インキュベートしてください。
- 抗体希釈バッファーまたは1X PBS中で遠心分離して洗浄してください。上清を捨ててください。繰り返す。直接標識抗体を使用した場合は、ステップ9へ進んでください。
- 抗体希釈バッファーで推奨希釈率に従って希釈した蛍光標識二次抗体100 µLで、細胞を再懸濁してください。
- 室温 (20～25℃) で30分間インキュベートしてください。遮光してください。
- 抗体希釈バッファーまたは1X PBS中で遠心分離して洗浄してください。上清を捨ててください。繰り返す。
- 細胞を1XPBSに再懸濁し、フローサイトメーターで解析してください。
