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PathScan® Sandwich ELISAプロトコール (化学発光ELISA - 凍結乾燥抗体を含むキット用)

注意：アッセイのインキュベーション温度については、製品のデータシートを参照してください。化学発光ELISAは、低容量のマイクロプレートを採用しています。各マイクロウェルごとに必要なサンプル量と試薬量は50 μLです。

A. 溶液および試薬

注意：溶液は精製水で調製してください。

  1. マイクロウェルストリップ​：使用前に全て試薬やプレートを室温に戻してください。
  2. 検出抗体​：凍結乾燥した緑色の塊または粉末です。高濃度のストック溶液を調製するため、検出抗体希釈液 (緑色) 0.5 mLを加えてください。穏やかに混合しながら室温で5分間インキュベートし、完全に溶解してください。ワーキング溶液を作成するために、溶解した検出抗体0.5 mLを全て、新しいチューブに入れた検出抗体希釈液5.0 mLに加えて、穏やかに混合してください。未使用のワーキング溶液は4°Cで4週間保存できます。
  3. HRP標識抗体*​：凍結乾燥された赤色の塊または粉末です。高濃度のストック溶液を調製するため、HRP希釈液 (赤色) 0.5 mLを加えてください。穏やかに混合しながら室温で5分間インキュベートし、完全に溶解してください。ワーキング溶液を調製するために、溶解したHRP標識抗体0.5 mLを全て、新しいチューブ中に入れたHRP希釈液5.0 mLに加えて、穏やかに混合してください。未使用のワーキング溶液は4°Cで4週間保存できます。
  4. 検出抗体希釈液​：検出抗体を溶解および希釈する緑色の希釈液 (5.5 mL)
  5. HRP希釈液​：HRP標識抗体を溶解および希釈する赤色の希釈液 (5.5 mL)
  6. サンプル希釈液​：細胞ライセートを希釈する青色の希釈液。
  7. 1X Wash Buffer​：PathScan® ​Sandwich ELISAキットに含まれる20X Wash Bufferを精製水で希釈してください。
  8. ​Cell Lysis Buffer​：10X Cell Lysis Buffer #9803または、1X PathScan® Sandwich ELISA Buffer #7018：調製したバッファーは、4℃で短期間 (1-2週間) 保存できます。推奨：1 mM phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) を使用直前に加えてください。
  9. Luminol/Enhancer SolutionとStable Peroxide Buffer​。

*注意：いくつかのPathScan® ELISAキットは、HRP標識抗体の代わりにHRP標識ストレプトアビジンを含む場合があります。

B. 細胞ライセートの調製

接着細胞の場合

  1. 密度が​80​-90%コンフルエントの細胞を用意し、培地を吸引除去してください。目的に応じて調節因子を含む新鮮な培地を加え、細胞を必要時間処理してください。
  2. 細胞を氷冷した1X PBSで1回洗浄してください。
  3. PBSを除去し、各プレート (10 cm径) に氷冷した1X Cell Lysis Buffer + 1 mM PMSF混合液0.5 mLを加え、プレートを氷上で5分間インキュベートしてください。
  4. 細胞をプレートから掻き取り、適切なチューブに移してください。氷上に保持してください。
  5. ライセートを氷上で超音波処理 (ソニケーション) してください。
  6. 4°Cで10分間遠心分離 (x14,000 rpm) し、上清を新しいチューブに移してください。上清が細胞ライセートです。アッセイ1回分ずつに分注し、-80℃で保存してください。

浮遊細胞の場合

  1. 解析対象となる細胞を増殖させ、生細胞密度が0.5​-1.0 x 106細胞/mLに達したら、低速遠心分離 (~1200 rpm) で細胞を集め、培地を除去してください。目的に応じて調節因子を含む新鮮な培地を加え、細胞を必要時間処理してください。
  2. 低速遠心分離 (~1200 rpm) により細胞を回収し、5-10 mLの氷冷した1X PBSで1回洗ってください。
  3. 1X Cell Lysis Buffer (1 mM PMSF添加) を、培養液50 mLから回収した細胞当り2.0 mL加え、溶解してください。
  4. ライセートを氷上で超音波処理 (ソニケーション) してください。
  5. 4°Cで10分間遠心分離 (x14,000 rpm) し、上清を新しいチューブに移してください。上清が細胞ライセートです。アッセイ1回分ずつに分注し、-80℃で保存してください。

C. 操作手順

  1. マイクロウェルストリップが室温に戻った後、必要な数のマイクロウェルを折り取ってください。マイクロウェルをストリップホルダーにセットしてください。未使用のマイクロウェルは、保存バッグ中に再度密封して直ちに4°Cで保存してください。
  2. 細胞ライセートは、そのまま、あるいは各PathScan® ​Sandwich ELISAキットに含まれてる青色のサンプル希釈液により希釈して、使用してください。予備実験で適切なライセート濃度を決定していただくことを推奨しますが、開始濃度を選択するための参考情報として各キットのデータシートに感度曲線を掲載しています。感度曲線は、広範なライセート濃度でのキットごとのアッセイ結果を示しています。
  3. 適切なウェルに、未希釈、あるいは希釈した各細胞ライセート50 μLを加えてください。テープで密封し、マイクロウェルの上からきつく押し付けてください。室温で2時間、プレートをインキュベートしてください。あるいは、プレートを4°Cで一晩インキュベートすることも可能です。
  4. テープを静かに取り除いてウェルを洗浄してください：
    1. 廃棄容器にプレートの内容物を捨ててください。
    2. 各ウェルを1X Wash Buffer ​​150 μLで4回、洗ってください。
    3. 各洗いの操作で、各ウェルに残った液を除去するために、十分な強さでプレートを新しいペーパータオルに叩きつけてください。ただし、常にウェルを乾燥させないようにしてください。
    4. 糸くずの出ないティッシュ (キムワイプ) で全てのウェルの裏側を拭いてください。
  5. 各ウェルに、溶解した検出抗体 (緑色) 50 μLを加えてください (セクションA、ステップ 2を参照)。テープで密封し、プレートを室温で1時間インキュベートしてください。
  6. 洗いの操作を繰り返してください (セクションC、ステップ4)。
  7. 各ウェルに、溶解したHRP標識二次抗体 (赤色) 50 μLを加えてください (セクションA、ステップ3を参照)。テープで密封し、プレートを室温で30分間インキュベートしてください。
  8. 洗いの操作を繰り返してください (セクションC、ステップ4)。
  9. Luminol/Enhancer Solutionと2X Peroxide Bufferを等量ずつ混合し、検出試薬のワーキング溶液を調製してください。
  10. 検出試薬ワーキング溶液50 μLを各ウェルに加えてください。
  11. プレート用ルミノメーターを用いて、基質を加えてから1-10分以内に、425​ nmでの相対発光量 (Relative Light Units : RLU) を測定してください。10分以内に測定した場合に至適なシグナル強度が得られます。

更新：2013年11月

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