Revision 1

#17498Store at -20C

1 Kit

(8 x 20 microliters)

Cell Signaling Technology

Orders: 877-616-CELL (2355) [email protected]

Support: 877-678-TECH (8324)

Web: [email protected] cellsignal.com

3 Trask LaneDanversMassachusetts01923USA
For Research Use Only. Not for Use in Diagnostic Procedures.
Product Includes Product # Quantity Mol. Wt Isotype/Source
Geminin (E5Q9S) XP® Rabbit mAb 52508 20 µl 25 kDa Rabbit IgG
CDT1 (D10F11) Rabbit mAb 8064 20 µl 65 kDa Rabbit IgG
Thymidine Kinase 1 (E2H7Z) Rabbit mAb 28755 20 µl 26 kDa Rabbit IgG
Phospho-Histone H3 (Ser10) (D7N8E) XP® Rabbit mAb 53348 20 µl 17 kDa Rabbit IgG
Cyclin A2 (E1D9T) Rabbit mAb 91500 20 µl 55 kDa Rabbit IgG
Cyclin B1 (D5C10) XP® Rabbit mAb 12231 20 µl 55 kDa Rabbit IgG
Cyclin E1 (D7T3U) Rabbit mAb 20808 20 µl 48 kDa Rabbit IgG
Phospho-cdc2 (Tyr15) (10A11) Rabbit mAb 4539 20 µl 34 kDa Rabbit 
Anti-rabbit IgG, HRP-linked Antibody 7074 100 µl Goat 

Please visit cellsignal.com for individual component applications, species cross-reactivity, dilutions, protocols, and additional product information.

Description

The Cell Cycle Phase Determination Antibody Sampler Kit provides an economical means of detecting total proteins or post-translational modifications present in cells at various phases of the cell cycle. Geminin is degraded in G1 phase, while CDT1 is degraded in S, G2, and M phases. Thymidine Kinase 1 accumulates in G1 phase, peaks in S phase, and is degraded before cell division. Phospho-Histone H3 (Ser10) is present only in M phase, while Phospho-cdc2 (Tyr15) is absent in M phase. Cyclins A2, B1, and E1 peak at G2 phase, late G2/M phase, and late G1/early S phase, respectively. The kit includes enough antibodies to perform two western blot experiments with each primary antibody.

Storage

Supplied in 10 mM sodium HEPES (pH 7.5), 150 mM NaCl, 100 µg/ml BSA, 50% glycerol and less than 0.02% sodium azide. Store at –20°C. Do not aliquot the antibody.

Background

The entry of eukaryotic cells into mitosis is regulated by cdc2/CDK1 kinase activation, a process controlled at several steps including cyclin B1 nuclear accumulation and binding, and phosphorylation of cdc2/CDK1 at Thr161 (1). At the end of mitosis, cyclin B1 is targeted for degradation by the anaphase-promoting complex (APC), allowing for cell cycle progression (2). A critical regulatory step in activating cdc2 during progression into mitosis is dephosphorylation of cdc2/CDK1 at Thr14 and Tyr15 (3).
Phosphorylation of Histone H3 at Ser10 is tightly correlated with chromosome condensation during both mitosis and meiosis (4).
Overcoming the G1/S checkpoint to commence DNA replication requires cyclin E, traversing the G2/M checkpoint to initiate mitosis requires cyclin B, and cyclin A is required for both S-phase and M-phase (5). Cyclin A availability is apparently the rate-limiting step for entry into mitosis, and cyclin A is required for completion of prophase (6).
Thymidine kinases play a critical role in generating the DNA synthetic precursor deoxythymidine triphosphate (dTTP). Cytoplasmic thymidine kinase 1 (TK1) expression and activity are regulated in a cell cycle-dependent manner, accumulating during G1-phase to peak levels in S-phase before being degraded prior to cell division (7).
The initiation of S phase begins with the formation of the pre-replication complex (pre-RC) in late mitosis/early G1 phase. CDT1 and cdc6 bind to the origin of DNA replication, which allows binding of the MCM2-7 complex. In order to ensure that replication occurs only once per cell cycle, geminin inhibits and destabilizes CDT1 during the S, G2 and M phases. At the metaphase/anaphase transition, geminin is degraded by the anaphase-promoting complex (APC) allowing for the formation of new pre-RC (8).

  1. Atherton-Fessler, S. et al. (1994) Mol Biol Cell 5, 989-1001.
  2. Gong, D. and Ferrell, J.E. (2010) Mol Biol Cell 21, 3149-61.
  3. Norbury, C. et al. (1991) EMBO J 10, 3321-9.
  4. Hendzel, M.J. et al. (1997) Chromosoma 106, 348-60.
  5. Pagano, M. et al. (1992) EMBO J 11, 961-71.
  6. Furuno, N. et al. (1999) J Cell Biol 147, 295-306.
  7. Munch-Petersen, B. (2010) Nucleosides Nucleotides Nucleic Acids 29, 363-9.
  8. Caillat, C. and Perrakis, A. (2012) Subcell Biochem 62, 71-87.

Background References

    Trademarks and Patents

    Cell Signaling Technology is a trademark of Cell Signaling Technology, Inc.
    XP is a registered trademark of Cell Signaling Technology, Inc.
    U.S. Patent No. 5,675,063.
    All other trademarks are the property of their respective owners. Visit cellsignal.com/trademarks for more information.

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